Для цитирования:
Толочилин Н. А., Кураева Ю. Г., Онучак Л. А., Куркин В. А. Определение флавоноидов в надземной части мелиссы лекарственной и котовника кошачьего методом капиллярного электрофореза // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2025. Т. 25, вып. 3. С. 264-272. DOI: 10.18500/1816-9775-2025-25-3-264-272, EDN: FJKXJM
Определение флавоноидов в надземной части мелиссы лекарственной и котовника кошачьего методом капиллярного электрофореза
Актуальной задачей современной аналитической химии является изучение многокомпонентных объектов, в том числе лекарственных растений, как с клинически доказанной фармакологической активностью, так и перспективныхс точки зрения фармации растений, не являющихся официнальными, но относящихся к одному и тому же семейству. Кроме того, особый интерес для фармации представляет определение содержания в этих растениях ценных видов флавоноидов (рутин, цинарозид, лютеолин), ввиду их высокой противоопухолевой активности. В настоящей работе в качестве объектов исследования были выбраны мелисса лекарственная (Melissa officinalis L.) и котовник кошачий (Népeta catária L.), которые относятся к семейству Яснотковые (Lamiáceae). Растения собраны в ботаническом саду Самарского национально-исследовательского университета им. ак. С. П. Королева. Цель работы заключалась в определении флавоноидов рутина, цинарозида и лютеолина в высушенных образцах этих растений. С применением стандартных образцов рутина, цинарозида и лютеолина показана возможность их селективного разделения в режиме капиллярного зонного электрофореза с УФ-детектированием (λ = 355 нм) при использовании боратного буферного электролита (pH 9,2). Предложена методика определения флавоноидов рутина, цинарозида и лютеолина в осушенных ботанических образцах растений после извлечения водно-этанольным раствором. Установлено, что присутствующие на электрофореграммах пики основных компонентов располагаются после пиков исследованных флавоноидов и они не оказывают мешающего влияния на определение рутина, цинарозида и лютеолина при их низком содержании в исследованных растительных объектах. Содержание исследованных флавоноидов в образцах мелиссы лекарственной в расчете на 1 гсухого сырья составило, мг/г: рутин – 0,351, лютеолин – 0,011, цинарозид не обнаружен. В котовнике кошачьем содержание флавоноидов составило, мг/г: рутин – 0,218, лютеолин – 0,027, цинарозид – 0,026.
- Куркин В. А. Фармакогнозия: учебник для студентов фармацевтических вузов (факультетов). 2-е изд., перераб. и доп. Самара : ООО «Офорт» ; ГОУВПО «СамГМУ Росздрава», 2007. 1239 с.
- Государственная фармакопея Российской Федерации XIV изд. Т. IV, Министерство здравоохранения Российской Федерации (2018). URL: http://femb.ru/femb/pharmacopea.php. (дата обращения: 10.11.2024).
- Сенченко С. П., Компанцева Е. В. Изучение электрофоретического поведения флавоноидов с целью разработки методологических подходов к их анализу в условиях капиллярного зонного электрофореза // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 4. С. 556. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=20806 (дата обращения: 10.11.2024). EDN: VDXBXJ
- Алексеева А. В., Мазур Л. И., Куркин В. А. Мелисса лекарственная: перспективы использования в педиатрической практике // Педиатрия. Журнал им. Г. Н. Сперанского. 2011. № 1. С. 90–95.
- Гарсия Е. Р., Шамилов А. А., Коновалов Д. А. Капиллярный электрофорез в анализе фенольных соединений травы татарника колючего // Современные достижения фармацевтической науки и практики : материалы Международной конференции, посвященной 60-летию фармацевтического факультета учреждения образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет» (Витебск, 31 октября 2019 г.) / под ред. А. Т. Щастного. Витебск : ВГМУ, 2019. С. 59–61.
- Никитина А. С., Феськов С. А., Гарсия Е. Р., Шамилов А. А., Никитина Н. В. Изучение фенольных соединений листьев розмарина лекарственного (Rosmarinus officinalis L.) из коллекции Никитского ботанического сада // Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2018. № 146. С. 201–204. https://doi.org/10.25684/NBG.scbook.146.2018.32
- Сампиев А. М., Хочава М. Р., Онбыш Т. Е., Парфенюк А. А. Исследование химического состава леспедецы двухцветной, произрастающей в Краснодарском крае // Вестник ВГУ. Серия: Химия, биология, фармация. 2020. № 3. C. 119–126.
- Зверев Я. Ф. Противоопухолевая активность флавоноидов // Бюллетень сибирской медицины. 2019. № 2. С. 181–194. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-181-194
- Morin Ph., Villard F., Dreux M. Borate complexation of flavonoid-0-glycosides in capillary electrophoresis II.Separation of flavonoid-3-O-glycosides differing in their sugar moiety // Journal of Chromatography. 1993. Vol. 628. P. 161–169. https://doi.org/10.1016/0021-9673(93)80345-9
- Vaher M., Koel M. Separation of polyphenolic compounds extracted from plant matrices using capillary electrophoresis // Journal of Chromatography A. 2003. Vol. 990. P. 225–230. https://doi.org/10.1016/s0021-9673(02)02013-7
- Volpi N. Separation of flavonoids and phenolic acids from propolis by capillary zone electrophoresis // Electrophoresis. 2004. Vol. 25. P. 1872–1878. https://doi.org/10.1002/elps.200405949
- Weser U. Chemistry and structure of some borate polyol compounds of biochemical interest // Structure and Bonding. 1967. Vol. 2. P. 160–180.
- Arceusz A., Wesolowski M., Ulewicz-Magulska B. Flavonoids and phenolic acids in methanolic extracts, infusions and tinctures from commercial samples of lemon balm // Natural Product Communications. 2015. Vol. 10, № 6. P. 977–981. https://doi.org/10.1177/1934578X1501000645
- Палий А. Е., Палий И. Н., Марко Н. В., Работягов В. Д. Биологически активные вещества Nepeta cataria L. // Бюллетень ГНБС. 2016. Вып. 118. C. 38–44.
- Petrisor G., Motelica L., Craciun L. N., Oprea O. C., Ficai D., Ficai A. Melissa officinalis: Composition, pharmacological effects and derived release systems – a review // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Vol. 23, № 7. Art. 3591. https://doi.org/10.3390/ijms23073591
- Гребенникова О. А., Палий А. Е., Логвиненко Л. А. Биологически активные вещества мелиссы лекарственной // Ученые записки Крымского федерального университета имени В. И. Вернадского. Биология. Химия. 2013. № 1 (65). С. 43–50.
- Arceusz A., Wesolowski M. Quality consistency evaluation of Melissa officinalis L. commercial herbs by HPLC fingerprint and quantitation of selected phenolic acids // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2013. № 83. P. 215–220. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2013.05.020
- Abdellatif F., Begaa S., Messaoudi M., Benarfa A., Ouakouak H., Hassani A., Sawicka B., Gandara J. S. HPLC–DAD analysis, antimicrobial and antioxidant properties of aromatic herb Melissa officinalis L., aerial parts extracts // Food Anal. Methods. 2023. Vol. 16. P. 45–54. https://doi.org/10.1007/s12161-022-02385-1
- Кащенко Н. И. Оленников Д. Н. Химический профиль и биологическая активность флавоноидов и фенилпропаноидов Nepeta cataria L. (Lamiaceae), итродуцированного в Восточной Сибири // Химия растительного сырья. 2016. № 2. С. 25–32. https://doi.org/10.14258/jcprm.2016021084