Izvestiya of Saratov University.

Chemistry. Biology. Ecology

ISSN 1816-9775 (Print)
ISSN 2541-8971 (Online)


For citation:

Tolochilin N. А., Kuraeva Y. G., Onuchak L. A., Kurkin V. A. Determination of flavonoids in the aerial parts of lemon balm and catnip using capillary electrophoresis. Izvestiya of Saratov University. Chemistry. Biology. Ecology, 2025, vol. 25, iss. 3, pp. 264-272. DOI: 10.18500/1816-9775-2025-25-3-264-272, EDN: FJKXJM

This is an open access article distributed under the terms of Creative Commons Attribution 4.0 International License (CC-BY 4.0).
Full text:
(downloads: 50)
Language: 
Russian
Heading: 
Article type: 
Article
UDC: 
615.322:543.545
EDN: 
FJKXJM

Determination of flavonoids in the aerial parts of lemon balm and catnip using capillary electrophoresis

Abstract: 

An important aspect of modern analytical chemistry is the study of multicomponent objects, including medicinal plants with clinically proven pharmacological activity, and promising plants from the point of view of pharmacy, which are not offi cinal, but belong to the same family. In addition, it is of interest for pharmacy to determine the content of valuable types of fl avonoids (rutin, cynaroside, luteolin) in these plants, due to their high antitumor activity. In this study, lemon balm (Melissa officinalis L.) and catnip (Nepeta cataria L.), both belonging to the Lamiaceae family, have been chosen as research objects. These plants have been collected from the botanical garden at Samara National Research University named after S. P. Korolev. The aim of the research was to quantify fl avonoids such as rutin, cynaroside, and luteolin in dried samples of these plants. Using standard samples of rutin, cynaroside, and luteolin, we demonstrated the possibility of separating them selectively through capi llary zone electrophoresis with UV detection at a wavelength of 355 nm using a borate buff er as an electrolyte with a pH of 9,2 . A method for the determination of rutin, cynaroside, and luteolin, in dried botanical plant samples after extraction using an aqueous ethanol solution has been proposed. It has been found that the peaks of the main components of plants in electrophoregram spectra are located after the peaks of the studied fl avonoids, and they do not interfere with the determination of these fl avonoids at low concentrations in the plant samples under investigation. The content of fl avonoids in lemon balm samples per 1 g of dry raw material is, mg/g: rutin – 0,351, luteolin – 0,011, cynaroside has not been detected. In catnip, the content of fl avonoids is, mg/g: rutin – 0,218, luteolin – 0,027, cynaroside – 0,026.

Reference: 
  1. Куркин В. А. Фармакогнозия: учебник для студентов фармацевтических вузов (факультетов). 2-е изд., перераб. и доп. Самара : ООО «Офорт» ; ГОУВПО «СамГМУ Росздрава», 2007. 1239 с.
  2. Государственная фармакопея Российской Федерации XIV изд. Т. IV, Министерство здравоохранения Российской Федерации (2018). URL: http://femb.ru/femb/pharmacopea.php. (дата обращения: 10.11.2024).
  3. Сенченко С. П., Компанцева Е. В. Изучение электрофоретического поведения флавоноидов с целью разработки методологических подходов к их анализу в условиях капиллярного зонного электрофореза // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 4. С. 556. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=20806 (дата обращения: 10.11.2024). EDN: VDXBXJ
  4. Алексеева А. В., Мазур Л. И., Куркин В. А. Мелисса лекарственная: перспективы использования в педиатрической практике // Педиатрия. Журнал им. Г. Н. Сперанского. 2011. № 1. С. 90–95.
  5. Гарсия Е. Р., Шамилов А. А., Коновалов Д. А. Капиллярный электрофорез в анализе фенольных соединений травы татарника колючего // Современные достижения фармацевтической науки и практики : материалы Международной конференции, посвященной 60-летию фармацевтического факультета учреждения образования «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет» (Витебск, 31 октября 2019 г.) / под ред. А. Т. Щастного. Витебск : ВГМУ, 2019. С. 59–61.
  6. Никитина А. С., Феськов С. А., Гарсия Е. Р., Шамилов А. А., Никитина Н. В. Изучение фенольных соединений листьев розмарина лекарственного (Rosmarinus officinalis L.) из коллекции Никитского ботанического сада // Биология растений и садоводство: теория, инновации. 2018. № 146. С. 201–204. https://doi.org/10.25684/NBG.scbook.146.2018.32
  7. Сампиев А. М., Хочава М. Р., Онбыш Т. Е., Парфенюк А. А. Исследование химического состава леспедецы двухцветной, произрастающей в Краснодарском крае // Вестник ВГУ. Серия: Химия, биология, фармация. 2020. № 3. C. 119–126.
  8. Зверев Я. Ф. Противоопухолевая активность флавоноидов // Бюллетень сибирской медицины. 2019. № 2. С. 181–194. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-2-181-194
  9. Morin Ph., Villard F., Dreux M. Borate complexation of flavonoid-0-glycosides in capillary electrophoresis II.Separation of flavonoid-3-O-glycosides differing in their sugar moiety // Journal of Chromatography. 1993. Vol. 628. P. 161–169. https://doi.org/10.1016/0021-9673(93)80345-9
  10. Vaher M., Koel M. Separation of polyphenolic compounds extracted from plant matrices using capillary electrophoresis // Journal of Chromatography A. 2003. Vol. 990. P. 225–230. https://doi.org/10.1016/s0021-9673(02)02013-7
  11. Volpi N. Separation of flavonoids and phenolic acids from propolis by capillary zone electrophoresis // Electrophoresis. 2004. Vol. 25. P. 1872–1878. https://doi.org/10.1002/elps.200405949
  12. Weser U. Chemistry and structure of some borate polyol compounds of biochemical interest // Structure and Bonding. 1967. Vol. 2. P. 160–180.
  13. Arceusz A., Wesolowski M., Ulewicz-Magulska B. Flavonoids and phenolic acids in methanolic extracts, infusions and tinctures from commercial samples of lemon balm // Natural Product Communications. 2015. Vol. 10, № 6. P. 977–981. https://doi.org/10.1177/1934578X1501000645
  14. Палий А. Е., Палий И. Н., Марко Н. В., Работягов В. Д. Биологически активные вещества Nepeta cataria L. // Бюллетень ГНБС. 2016. Вып. 118. C. 38–44.
  15. Petrisor G., Motelica L., Craciun L. N., Oprea O. C., Ficai D., Ficai A. Melissa officinalis: Composition, pharmacological effects and derived release systems – a review // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Vol. 23, № 7. Art. 3591. https://doi.org/10.3390/ijms23073591
  16. Гребенникова О. А., Палий А. Е., Логвиненко Л. А. Биологически активные вещества мелиссы лекарственной // Ученые записки Крымского федерального университета имени В. И. Вернадского. Биология. Химия. 2013. № 1 (65). С. 43–50.
  17. Arceusz A., Wesolowski M. Quality consistency evaluation of Melissa officinalis L. commercial herbs by HPLC fingerprint and quantitation of selected phenolic acids // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2013. № 83. P. 215–220. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2013.05.020
  18. Abdellatif F., Begaa S., Messaoudi M., Benarfa A., Ouakouak H., Hassani A., Sawicka B., Gandara J. S. HPLC–DAD analysis, antimicrobial and antioxidant properties of aromatic herb Melissa officinalis L., aerial parts extracts // Food Anal. Methods. 2023. Vol. 16. P. 45–54. https://doi.org/10.1007/s12161-022-02385-1
  19. Кащенко Н. И. Оленников Д. Н. Химический профиль и биологическая активность флавоноидов и фенилпропаноидов Nepeta cataria L. (Lamiaceae), итродуцированного в Восточной Сибири // Химия растительного сырья. 2016. № 2. С. 25–32. https://doi.org/10.14258/jcprm.2016021084
Received: 
27.01.2025
Accepted: 
04.04.2025
Published: 
30.09.2025
Short text (in English):
(downloads: 31)