Известия Саратовского университета. Новая серия.

Серия Химия. Биология. Экология

ISSN 1816-9775 (Print)
ISSN 2541-8971 (Online)


Для цитирования:

Селиверстова Е. Ю., Выростков В. А., Яровая Е. В., Куликов М. П., Дробот В. Ю., Сазыкин И. С., Сазыкина М. А. Влияние загрязняющих веществ на возникновение устойчивости к рифампицину у бактерий рода Pseudomonas // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2018. Т. 18, вып. 4. С. 439-445. DOI: 10.18500/1816-9775-2018-18-4-439-445

Статья опубликована на условиях лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International (CC-BY 4.0).
Полный текст в формате PDF(Ru):
(загрузок: 153)
Язык публикации: 
русский
Рубрика: 
Тип статьи: 
Научная статья
УДК: 
579.26

Влияние загрязняющих веществ на возникновение устойчивости к рифампицину у бактерий рода Pseudomonas

Авторы: 
Селиверстова Екатерина Юрьевна, Южный федеральный университет
Выростков Владимир Андреевич, Южный федеральный университет
Яровая Екатерина Васильевна, Южный федеральный университет
Куликов Максим Павлович, Южный федеральный университет
Дробот Валерия Юрьевна, Южный федеральный университет
Сазыкин Иван Сергеевич, Южный федеральный университет
Сазыкина Марина Александровна, Южный федеральный университет
Аннотация: 

Распространению антибиотикорезистентности среди бактерий в природе может способствовать антропогенный прессинг, оказываемый на экосистемы. В связи с этим цель настоящей работы состояла в исследовании влияния отдельных биоцидов, антибиотиков, пестицидов и тяжелых металлов на возникновение устойчивых к рифампицину мутантов Pseudomonas putida. Для оценки влияния токсических веществ на возникновение рифампицин-устойчивых мутантов в питательную среду перед посевом на чашки добавляли исследуемые вещества и рифампицин в конечной концентрации 100 мкг/мл. В ходе проведенного эксперимента было показано стимулирующее влияние клопиралида и глифосата на данный процесс. Наиболее ярко выраженный эффект наблюдался в случае применения глифосата в концентрации 0,67 мг/мл. Полученные в ходе исследования результаты указывают на высокий риск распространения устойчивости к антибиотикам среди микробных сообществ почв, подверженных обработке пестицидами.

Список источников: 

1. Сазыкина М. А., Сазыкин И. С., Хмелевцова Л. Е., Хаммами М. И., Селиверстова Е. Ю. Антибиотики и гены антибиотикорезистентности в окружающей среде // Вестн. биотехнологии и физ.-хим. биологии им. Ю. А. Овчинникова. 2016. Т. 12, № 2. С. 30-40.

2. Y?lmaz C. Ozcengiz G. Antibiotics: Pharmacokinetics, toxicity, resistance and multidrug effl ux pumps // Biochem. Pharmacology. 2017. Vol. 133. P. 43–62.

3. Ling L. L., Schneider T., Peoples A. J., Spoering A. L., Engels I, Conlon B. P., Mueller A., Schaberle T. F., Hughes D.E., Epstein S., Jones M., Lazarides L., Steadman V. A., Cohen D. R., Felix C. R., Fetterman K. A., Millett W.P., Nitti A. G., Zullo A.M., Chen C., Lewis K. A new antibiotic kills pathogens without detectable resistance // Nature. 2015. Vol. 517. P. 455-459.

4. Kim H. U., Blin K., Lee S. Y., Weber T. Recent development of computational resources for new antibiotics discovery // Current Opinion in Microbiology. 2017. Vol. 39. P. 113-120.

5. Suzuki S., Horinouchi T., Furusawa C. Suppression of antibiotic resistance acquisition by combined use of antibiotics // J. of Biosci. and Bioengineer. 2015. Vol. 120, № 4. P. 467-469.

6. Супотницкий М. В. Механизмы развития резистентности к антибиотикам у бактерий // Биопрепараты. 2011. № 2. С. 4–11.

7. Rolain J. M., Abat C., Jimeno M.-T., Fournier P.-E., Raoult D. Do we need new antibiotics? // Clinical Microbiology and Infection. 2016. Vol. 22, № 5. P. 408-415.

8. Safari Sinegani A. A., Younessi N. Antibiotic resistance of bacteria isolated from heavy metal-polluted soils with different land uses // J. of Global Antimicrob. Resist. 2017. Vol. 10. P. 247-255

9. Wesgate R., Grasha P., Maillard J.-Y. Use of a predictive protocol to measure the antimicrobial resistance risks associated with biocidal product usage // Amer. J. of Infect. Control. 2016. Vol. 44. P. 458-464.

10. Molina-Gonzalez D., Alonso-Calleja C., Alonso-Hernando A. Effect of sub-lethal concentrations of biocides on the susceptibility to antibiotics of multi-drug resistant Salmonella enterica strains // Food Control. 2014. Vol. 40. P. 329-334.

11. Rangasamy K., Athiappan M., Devarajan N., Parray J. A. Emergence of multi drug resistance among soil bacteria exposing to insecticides // Microb. Pathogen. 2017. Vol. 105. P. 153-165.

12. Rangasamy K., Athiappan M., Devarajan N., Samykannu G., Parray J. A., Aruljothi K. N., Shameem N., Alqarawi A. A., Hashem A., Abd-Allah E. F. Pesticide degrading natural multidrug resistance bacterial fl ora // Microb. Pathogen. 2018. Vol. 114. P. 304-310.

13. Jatsenko T., Tover A., Tegova R., Kivisaar M. Molecular characterization of Rif r mutations in Pseudomonas aeruginosa and Pseudomonas putida // Mutation Res. 2010. Vol. 683. P. 106-114.

14. Sambrook J., Fritsch E. F., Maniatis T. Molecular cloning : A Laboratory Manual. Cold Spring Habor Laboratory press, 1982. 479 p.

15. Сазыкина М. А., Чистяков В. А., Сазыкин И. С., Лагутова Л. П., Новикова Е. М., Латышев А. И. Использование бактериального lux-биосенсора для детекции загрязнения природных вод ртутью // Вода : химия и экология. 2010. № 5. С. 24-29.

16. Rivera-Ramirez X. O., Hernandez-Ojeda S. L., Espinosa-Aguirre J. J., Camacho-Carranza R. Antibiotic resistance mutations in bacteria selected by exposure to pesticides // Toxicol. Lett. 2016. Vol. 259. Supplement. P. S218-S219. DOI: https://doi.org/10.1016/j.toxlet.2016.07.52

17. Wu D., Lu R., Chen Yu., Deng Chao., Tan Q. Study of cross-resistance mediated by antibiotics, chlorhexidine and Rhizoma coptidis in Staphylococcus aureus // J. of Global Antibiotic Resistance. 2016. № 7. P. 61-66.