Vir-обусловленный перенос производных плазмиды RSF1010 между агробактериями и энтеробактериями
Показана принципиальная способность генов вирулентности vir почвенной бактерии Agrobacterium tumefaciens детерминировать перенос производных плазмиды RSF1010 в клетки энтеробактерий Escherichia coli, Erwinia carotovora и Erwinia herbicola. Перенос производных плазмиды RSF1010 из клеток микроорганизма A.tumefaciens, относящегося к семейству Rhizobiaceae, в клетки трех указанных представителей семейства Enterobacteriaceae происходит с эффективностью порядка 10?4 в пересчете на клетку бактерии-реципиента, что сравнимо с внутривидовыми скрещиваниями.
1. Chilton M.-D., Drummond M. N., Merlo D. J., Montoya A., Gordon M. P., Nester E. W. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigenesis // Cell. 1977. Vol. 11, № 2. P. 263–267.
2. Lessl M., Balser D., Pansegraw W., Lanka E. Seguence similarities between the RP4 Tra2 and the VirB region strongly support the conjugation model for T-DNA transfer // J. Biol. Chem. 1992. Vol. 267, № 28. P. 20471–20480.
3. Shirasu K. Membrane location of the Ti plasmid VirB proteins involved in the biosynthesis of a pilin-like conjugative structure on Agrobacterium tumefaciens // FEMS Microbiol. Letters. 1993. Vol. 111, № 2–3. P. 287–294.
4. Alt-Moerbe J., Stryker L., Fugua C., Li P. L., Farrand S. K., Winans S. C. The conjugal transfer system of Agrobacterium tumefaciens octopine-type Ti plasmids is closely related to the transfer system of an IncP plasmid and distantly related to Ti plasmid vir genes // J. Bacteriol. 1996. Vol. 178, № 14. P. 4148–4257.
5. Cook D. M., Farrand S. K. The Ori T region of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid pTiC58 shares DNA seguence identity with the transfer origin of RSF1010 and RK2/RP4 and with T region borders // J. Bacteriol. 1992. Vol. 174, № 19. P. 6238–6246.
6. Buchanan-Wollaston V., Passiatore J. E., Cannon F. The mob and oriT mobilization functions of a bacterial plasmid promote its transfer to plants // Nature. 1997. Vol. 328. P. 172–176.
7. Lee L. Y., Gelvin S. V. Osa protein constitutes a strong oncogenic suppression system that can block vir-dependent transfer of IncQ plasmids between Agrobacterium cells and the establishment of IncQ plasmids in plant cells //J. Bacteriol. 2004. Vol. 186, № 21. P. 7254–7561.
8. Beijersbergen A., Dulk-Ras A. K. den, Shiperoort R. A., Hooykass P. J .J. Conjugative transfer by the virulence system of Agrobacterium tumefaciens // Science. 1992. Vol. 256. P. 1324–1327.
9. Lui Z., Binns A.N. Functional subsets of the virB type IV transport complex proteins involved in the capacity of Agrobacterium tumefaciens to serve as a recipient in virB-mediated conjugal transfer of plasmid RSF1010 //J. Bacteriol. 2003. Vol. 185, № 11. P. 3259–3269.
10. Klapwijk P. M., Shilperoort R. A. Negative control of octopine degradation and transfer genes of octopine Ti plasmids in Agrobacterium tumefaciens // J. Bacteriol. 1979. Vol. 139, № 2. P. 424–431.
11. Melchers L. S., Regensburg-Tuink T .J. G., Bourret R. B., Sedee N .J. A., Shilperoort R. A., Hooykaas P .J .J. Membrane topology and functional analysis of of the sensory protein VirA of Agrobacterium tumefaciens // EMBO J. 1989. Vol. 8. P. 1919–1929.
12. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. Методы генетической инженерии. М.: Мир, 1984. 463 с.
13. Dye D. M. A. A taxonomic study of the genus Erwinia. II. The «carotovora» group // New Zealand J. Sci. 1969. Vol. 12. P. 81–97.
14. Wing W. N., Fife M. A. Enterobacter agglomerans (Beijerink) comb. nov. (The Herbicola-Lathiri bacteria) // Intern. J. Systematic Bacteriol. 1972. Vol. 22. P. 4–11.
15. Rogowsky P. M., Powell B. S., Shirasu K., Lin T.-S., Morell P., Zyprian E. M., Steck T. R., Kado C. I. Molecular characterization of the vir regulon of Agrobacterium tumefaciens: complete nucleotide seguence and gene organization of the 28.63-kbp regulon cloned as single unit // Plasmid. 1990. Vol. 23. P. 85–106.
16. Великов В. А., Улитин А. Б., Чернышов С. В. Получение штаммов Agrobacterium tumefaciens, не способных к росту на средах для культивирования клеток и тканей растений in vitro // Биотехнология. 2004. T. 3. C. 30–37.
17. Ziprian E., Kado C. I. Agrobacterium-mediated plant transformation by novel mini-T vectors in cojunction with a high-copy vir region helper plasmid // Plant Molecular Biol. 1990. Vol. 15. P. 245–256.
18. Hynes M. F., Quadrant J., Connel M. P. O., Puhler A. Direct selection for curing and deletion of Rhizobium plasmids using transposon carryng the Bacillus subtilis sacB gene // Gene. 1989. Vol. 78. P. 111–120.
19. Генная инженерия растений. Лабораторное руководство : пер с англ. М.: Мир, 1991. 408 с.
20. Великов В. А., Бурьянов Я. И. Образование делеционных производных Ti-плазмиды pGV3850 при конъюгационном переносе из Agrobacterium tumefaciens в Escherichia coli // Генетика. 1998. T. 32, № 8. C. 1056–1062.
21. Пехов А. П. Основы плазмидологии. М.: Изд-во РУДН, 1996. 232 с.