Известия Саратовского университета. Новая серия.

Серия Химия. Биология. Экология

ISSN 1816-9775 (Print)
ISSN 2541-8971 (Online)


Для цитирования:

Шишонкова Н. С., Смолькина О. Н., Чернышова М. П., Игнатов В. В. ВЫДЕЛЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ЛИПОПОЛИСАХАРИДА HERBASPIRILLUM SEROPEDICAE Z78 // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2011. Т. 11, вып. 2. С. 79-85. DOI: 10.18500/1816-9775-2011-11-2-79-85

Статья опубликована на условиях лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International (CC-BY 4.0).
Полный текст в формате PDF(Ru):
(загрузок: 159)
Язык публикации: 
русский
Рубрика: 
Тип статьи: 
Научная статья
УДК: 
579.84+577.114.083+577.115

ВЫДЕЛЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ЛИПОПОЛИСАХАРИДА HERBASPIRILLUM SEROPEDICAE Z78

Авторы: 
Шишонкова Наталья Сергеевна, Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН
Смолькина Ольга Николаевна, Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН
Чернышова Мария Павловна, Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН
Игнатов Владимир Владимирович, Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов РАН
Аннотация: 

Из внешней мембраны бактерий Herbaspirillum seropedicae Z78
с использованием различных методов выделены препараты ли-
пополисахаридов (ЛПС). Ds-Na-электрофорез выявил их гете-
рогенную природу с преобладанием молекул R-формы. Анализ
ЛПС показал присутствие характерных компонентов этих глико-
полимеров: углеводов, КДО и жирных кислот липида А. Среди
основных компонентов гидрофобной части ЛПС идентифициро-
ваны 3-гидроксиундекановая, 2-гидроксидодекановая, 3-гидрок-
сидодекановая, тетрадекановая, 2-гидрокситетрадекановая и
гексадекановая кислоты. Полисахаридная часть ЛПС содержала
рамнозу, маннозу, глюкозу, галактозу, глюкозамин и гептозу –
обязательную составляющую коровой области ЛПС, а также не-
идентифицированный моносахарид.
 

Список источников: 

1. Baldani J. I., Baldani V. L. D., Seldin L., Dobereiner J.
Characterization of Herbaspirillum seropedicae gen. nov.
sp. nov.: a root-associated nitrogen-fi xing bacterium //
Intern. J. Syst. Bacteriol. 1986. Vol. 36. P. 86–93.
2. Baldani J. I., Baldani V. L. D. History of biological
nitrogen-fi xation research in graminaceous plants: special
emphasis on the Brazilian experience // Ann. Brasil Acad.
Sci. 2005. Vol. 77, iss. 3. P. 547–579.
3. James E. K., Olivares F. L. Infection and colonization of
sugar cane and other graminaceous plants by endophytic
diazotrophs // Crit. Rev. Plant Sci. 1998. Vol. 17, iss.1.
P. 77–119.
4. Roncato-Maccari L.D.B., Ramos H.J.O., Pedrosa F.O.,
Alquini Y., Chubatsu L.S., Yates M.G., Rigo L.U., Steffens
M.B.R., Souza E.M. Endophytic Herbaspirillum seropedicae
express nif genes in gramineous plants // FEMS
Microbiol. Ecol. 2003. Vol. 45, iss. 1. P. 39–47.
5. Elbeltagy A., Nishioka K., Sato T., Suzuki H., Ye B.,
Hamada T., Isawa T., Mitsui H., Minamisawa K. Endophytic
colonization and in planta nitrogen fi xation
by a Herbaspirillum sp. isolated from wild rice species
// Appl. Environ. Microbiol. 2001. Vol. 67, iss. 11.
P. 5285–5493.
6. Luderitz O., Freudenberg M., Galanos C., Zehman K.,
Rietschel E., Shaw D.H. Lipopolysaccharide of gramnegative
bacteria // Curr. Top. Membr. Transport. 1982.
Vol. 17. P. 79–134.
7. Vaara M. Antibiotic-supersusceptible mutants of Escherichia
coli and Salmonella typhimurium // Antimicrob.
Agents. Chemother. 1993. Vol. 37. P. 2255–2260.
8. Nikaido H., Vaara M. Molecular basis of bacterial outer
membrane permeability // Microbiol. Rev. 1985. Vol. 49.
P. 1–32.
9. Serrato R. V., Sassaki G. L., Cruz L. M., Carlson R. W.,
Muszynski A., Monteiro R. A., Pedrosa F. O., Iacomini M.
Chemical composition of lipopolysaccharides isolated
from various endophytic nitrogen-fi xing bacteria of the
genus Herbaspirillum // Can. J. Microbiol. 2010 Vol. 56,
iss. 4. P. 342–347.
10. Konnova S. A., Makarov O. E., Skvortsov I. M., Ignatov
V. V. Isolation, fractionation and some properties of
polysaccharides produced in a bound form by Azospirillum
brasilense and their possible involvement in Azospirillum
– wheat root interaction // FEMS Microbiol. Lett. 1994.
Vol. 118, № 2. P. 93–99.
11. Whitfi eld C., Roberts I.S. Structure, assembly and regulation
of expression of capsules in Escherichia coli // Mol.
Microbiol. 1999. Vol. 31, iss. 5. P. 1307–1319.
12. Смолькина О. Н., Качала В. В., Федоненко Ю. П., Бу-
рыгин Г. Л., Здоровенко Э. Л., Матора Л. Ю., Конно-
ва С. А., Игнатов В. В. Капсульный полисахарид бак-
терий Azospirillum lipoferum Sp59b: структура, анти-
генная специфичность // Биохимия. 2010. Т. 75, вып. 5.
С. 707–716.
13. Hitchcock P. J., Brown T. M. Morphological heterogeneity
among Salmonella lipopolysaccharide chemotypes in
silver-stain polyacrylamide gels // J. Bacteriol. 1983. Vol.
154. P. 269–277.
14. Tsai C. M., Frasch C. E. A sensitive silver stain for delecting
lipopolysaccharides in polyacrylamide gels // Anal.
Biochem. 1982. Vol. 119. P. 115–119.
15. Galanos C., Luberitz O., Westohal O. A new method for
the extraction of R lipopolysaccharides // Eur. J. Biochem.
1969. Vol. 9, № 2. P. 245–249.
16. Вестфаль О., Янн К. Бактериальные липополисахари-
ды. Методы химии углеводов. М., 1967. С. 325–332.
17. Boivin A., Mesrobeanu L. Extraction d'un complexe
toxique et antique a partir du bacilli d'aertycke // Cоmpt.
Rend. Soc. Boil. 1933. Vol. 114, № 30. P. 307–310.
18. Hakomori S.-I. A rapid permetylaion of glicolipids and
polysaccharides catalyzed by methylsulfinyl carbanion
in dimethylsulfoxide // J. Biochem. 1964. Vol. 55.
P. 205 –208.
19. Sawardeker J. S., Sloneker J. H., Jeanes A. Quantitative
determination of monosaccharides as their alditol acetates
by gas liquid chromatography // Anal. Chem. 1965. Vol.
37. P. 1602–1603.
20. Захарова И. Я., Косенко Л. В. Методы изучения
микробных полисахаридов. Киев, 1982. 192 с.
21. Stead D.E. Grouping of plant-pathogenic and some other
Pseudomonas spp. by using cellular fatty acid profi les //
Intern. J. Syst. Bacteriol. 1992. Vol. 42, № 2. P. 281–295. 

22. Heike R.U.S., Freudenberg M., Weckesser J., Mayer H.
Lipopolysaccharide of Rhodospirillum salinarum 40:
structural studies on the core and lipid A region // Arch.
Microbiol. 1995. Vol. 164. P. 280–289.
23. Красикова И. Н., Соловьева Т. Ф., Оводов Ю. С. Струк-
тура и свойства липида А – компонента эндотоксинов
грамотрицательных бактерий // Химия природных
соединений. 1989. № 5. С. 601–616.
24. Кагава Я. Биомембраны. М., 1985. 303 с.
25. Wiese A., Seydel U. Interaction of peptides and proteins
with bacterial surface glycolipids: a comparison of glycosphingolipids
and lipopolysaccharides // J. Ind. Microbiol.
Biotech. 1999. Vol. 23. P. 414–424.

Поступила в редакцию: 
24.08.2011
Принята к публикации: 
13.11.2011
Опубликована: 
12.12.2011