Известия Саратовского университета. Новая серия.

Серия Химия. Биология. Экология

ISSN 1816-9775 (Print)
ISSN 2541-8971 (Online)

Для цитирования:

Глинская Е. В., Нечаева О. В., Лунева И. О., Аль-Баяти Б. М. Чувствительность к антибиотикам патогенных микроорганизмов при смешанных инфекциях мочевыводящих путей // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2015. Т. 15, вып. 4. С. 63-?. DOI: 10.18500/1816-9775-2015-15-4-63-66

Статья опубликована на условиях лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International (CC-BY 4.0).
Полный текст в формате PDF(Ru):
скачать
(загрузок: 87)
Язык публикации: 
русский
Рубрика: 
Биология
Тип статьи: 
Научная статья
УДК: 
579.61
DOI: 
10.18500/1816-9775-2015-15-4-63-66

Чувствительность к антибиотикам патогенных микроорганизмов при смешанных инфекциях мочевыводящих путей

Авторы: 
Глинская Елена Владимировна, Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н. Г. Чернышевского
Нечаева Ольга Викторовна, Саратовский государственный медицинский университет имени В. И. Разумовского
Лунева Ирина Олеговна, Саратовский государственный медицинский университет имени В. И. Разумовского
Аль-Баяти Басим Мохаммад, Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н. Г. Чернышевского
Аннотация: 

Исследование направлено на оценку видового состава патоген- ных микроорганизмов при смешанных инфекциях мочевыводя- щих путей (ИМП) и определение их чувствительности к антибиотикам. Для идентификации бактерий были отобраны образцы мочи у 325 пациентов с подозрением на ИМП с дальнейшим выделением патогенов и изучением их биохимической активно- сти. Из 200 образцов мочи были выделены патогенные микроорганизмы – возбудители ИМП. В 55,5% случаев возбудителем являлись бактерии Escherichia coli, в 14% – Klebsiella spp., в 11,5% – Enterobacter spp., в 10% Proteus spp., в 6% – Pseudomonas spp., в 1,5% – Morganella morganii и Acinetobacter baumannii. Все выделенные штаммы были чувствительны к имипенему и амикацину (100%). Большинство штаммов проявили чувстви- тельность к нитрофурантоину (71%), тобрамицину (64%) и ци-профлоксацину (58,5%). Высокая устойчивость изолятов наблюдалась по отношению к ампициллину (92%), аугментину (86%), триметоприм – сульфаметоксазолу (83%).

Ключевые слова: 
UTI
signs and symptoms
causative agents
antibiotic sensitivity.
Список источников: 

1. Foxman B., Barlow R., D’arcy H. UTI: Self-reported incidence and associated costs // Ann. Epidemiol. 2000. Vol. 10. P. 509-515.

2. Mandelle G. L., Benntt J. E., Dolin R. Principles and practice of infectious diseases. 5th ed. Philadelphia : Churchill Livingstone, 2005. P. 881-882.

3. Barret S. P., Savage M. A., Rebec M. P., Guyot A. Antibiotic sensitivity of bacteria associated with community acquired UTI in Britain // J. Antimicrob. Chemother. 1999. Vol. 44. P. 359-365.

4. Karbwsky J. A., Jones M. E., Thornsberry C., Friedland I. R., Sahm D. F. Trends in antimicrobial susceptibilities among Enterobacteriaceae isolated from hospitalized patients in the US from 1998-2001 // J. Antimicrob. Agents and Chemother. 2003. Vol. 47. P. 1672-1680.

5. Nicolle L. E. Uncomplicated UTI in adult including uncomplicated pyelonephritis // Urol. Clin. Nor. Amer. 2008. Vol. 35, № 1. P. 1-12.

6. Dromigny J. A., Nabeth P., Juergens B. A., PerrierGros-Claude J. D. Risk factors for antibiotic-resistance Escherichia coli UTI in Dakar, Senegal // J. Antimicrob. Chemother. 2005. Vol. 56. P. 236-239.

7. Bronsema D. A., Adams J. R., Pallares R. Secular trends in rates and etiology of nosocomial UTIs at a university hospital // J. Urol. 1993. Vol. 150. P. 414-416.

8. Zalamanovici T. A., Green H., Paul M., Yaphe J., Leibovici L. Antimicrobial agents for treating uncomplicated UTIin women // Cochrane Database System. Rev. 2010. Vol. 10, № 10.

9. Bachelier C. D., Bernslein J. M. Urinary Tract Infections // Med. Clin. North. Amer. 1997. Vol. 81. P. 719-729.

10. Annabelle T., Dytan M. D., Jennifer A., Chua M. D. Surveillance of pathogens and resistance patterns in UTIs // J. Microbiol. and Infect. Dis. 1999. Vol. 28, № 1. P. 11-14.

11. Acar J. F., Goldsein F. W. Trends in bacterial resistance to fl uoroquinolones // Clin. Infect. Dis. 1997. Vol. 24, № 1. P. 67-73.

12. Azra S. H., Nair D., Kaur J., Baweja G. Resistance patterns of Urinary isolates in a tertiary Indian hospital // Ayub Med. Coll. Abottabad. 2007. Vol. 19. P. 39-41.

13. Gupta K., Sahm D., Mayfi eld D., Stamm W. Antimicrobial resistance among uropathogens that cause community acquired UTIs in women : A nationwide analysis // Clin. Infect. Dis. 2001. Vol. 33. P. 89-94.

14. Sleigh J. D., Timbury M. C. Notes on Medical Bacteriology. N.Y. : Churchill Livingstone Inc., 1986. P. 212-218.

15. Kareem I. J., Raheed I. Y. Antibiotic susceptibilities of gram negative aerobic bacteria isolated from UTIs in community // Iraqi J. Med. Sci. 2011. Vol. 9, № 4. P. 295-300.

16. Mahmood M. A. Prevalence and antimicrobial susceptibility of pathogens in UTIs // J. Al-Nahrain Univer. 2011. Vol. 14, № 4. P. 146-152.

17. Bauer A. W., Kirby W. M., Sherris J. C., Truch M. Antibiotic susceptibility testing by standarized single disc method // Amer. J. Clin. Pathol. 1996. Vol. 45, № 4. P. 493-496.

18. Karki A., Tiwari B. R., Pradhan S. B. Study on bacteria isolated from UTI and their sensitivity pattern // J. Nepal Med. Assoc. 2004. Vol. 43. P. 200-203.

19. Adedeji B. A., Abdulkadir O. A. Etiology and antimicrobial resistance pattern of bacterial agents of UTIs in students of tertiary institusions in Yola metropolis // Advan. Biol. Res. 2009. Vol. 3, № 3-4. P. 67-70.

20. Mehr M. T., Khan H., Khan T. M., Iman N. U. Escherichia coliurine super bug and its antibiotic sensitivity: A perspective study // Med. Sci. 2010. Vol. 18, № 2. P. 110-113.

21. Kebira A. N., Ochola P., Khamadi S. A. Isolation and antimicrobial susceptibility testing of Escherichia coli causing UTIs // Appl. Biosci. 2009. Vol. 22. P. 1320-1325.

22. Atienza Morales M. P., Castellote Varona F. J., Romero Portilla C. UTI and antibiotic sensitivity in the south of Albacete, Spain // Anales de Medicina Interna. 1999. Vol. 16, № 5. P. 236-238.

23. Ozumba U. C. Increasing incidence of bacterial resistance to antibiotics by isolates from the urinary tract, Niger // Intern. J. Clin. Prac. 2005. Vol. 8, № 2. P. 107-109.

24. Muhammed A., Muhammed F., Muhammed A.-H., Imam H. A prospective study of patterns of UTIs and antibiotic sensitivity in rural setting of Mirpurkhas // Muhammed Med. Coll. 2010. Vol. 1, № 1. P. 10-14.

25. Kiffer C. R., Kuti J. L., Eagye K. J., Mendes C., Nicolau D. P. Pharmacodynamic profi ling of imipenem, meropenem and ertapenem against clinical isolates of ESBL producing Escherichia coli and Klebsiella spp. from Brazil // Intern. J. Antimicrob. Agents. 2006. Vol. 28, № 4. P. 340-344.

26. Rajesh K. R., Mathavi S., Priyadarsni R. I. Prevalence of antimicrobial resistance in uropathogens and determining empirical therapy for UTIs // Intern. J. Bas. and Appl. Med. Sci. 2010. Vol. 1, № 4. P. 210-215.

27. Ahmed A. A., Osman H., Mansour A.M., Musa H. A. Antimicrobial agent resistance in bacterial isolates from patients with diarrhea and UTI in Sudan // Amer. J. Trop. Med. and Hyg. 2000. Vol. 63. P. 259-263.

28. Ndugulile F., Jureen R., Harthug S., Urassa W., Langeland N. ESBLs among gram-negative bacteria of nosocomial origin from an intensive care unit of a tertiary health facility in Tanzania // BMC Infect. Dis. 2005. Vol. 5. P. 86.

29. Moyo S. J., Aboud S., Kasubi M., Lyamuya E. F., Maselle S. Y. Antimicrobial resistance among producers and non-producers of ESBLs in urinary isolates at a tertiary Hospital in Tanzania // BMC Res. Notes. 2010. Vol. 3. P. 348.