1.  Rhen M., Eriksson S., Pettersson S. Microbial manipulation of innate immunity responses // Curr. Opin. in Microbiol. 2000. Vol. 3. P. 60-64.

2.  Васильченко А. С. Исследование морфо-функциональной реакции бактерий на различные воздействия с использованием атомно-силовой микроскопии : автореф. дис. … канд. биол. наук. Пермь, 2012. 22 с.

3.  Nikiyan H., Vasilchenko A., Deryabin D. AFM investigations of various disturbing factors on bacterial cells // Formatex. 2010. P. 523-529.

4.  Domenech O., Francius G., Tulkens P. M., Bambeke F. V., Durfene Y., Mingeot-Leclercq M.-P. Interactions of oritavancin, a new lipoglycopeptide derived from vancomycin, with phospholipid bilayers : effect on membrane permeability and nanoscale lipid membrane organization // Biochim. et Biophys. Acta. 2009. Vol. 1788. P. 1832–1840.

5.   Couture-Tosi E., Ranck J.-L., Haustant G., Pehau-Arnaudet G., Sachse M. Cemovis on a pathogen : analysis of Bacillus anthracis spore // Biol. Cell. 2010. Vol. 102. P. 609–619.

6.  Ouberai M., Garch F. E., Bussiere A., Riou M., Alsteens D., Lins L., Baussanne I., Dufrene Y. F., Brasseur R., Decout J.-L., Mingeot-Leclercq M.-P. The Pseudomonas aeruginosa membranes: a target for a new amphiphilic aminoglycoside derivative? // Biochim. et Biophys. Acta. 2011. Vol. 1808. P. 1716-1727.

7.  Braga P. C., Ricci D. Atomic force microscopy : application to investigation of Escherichia coli morphology before and after exposure to cefodizime // Antimicrob. Agents and Chemother. 1998. Vol. 42, № 1. P. 18-22.

8.  Ерохин П. С., Уткин Д. В., Кузнецов О. С., Коннов Н. П., Осина Н. А. Применение атомно-силовой микроскопии для определения воздействия антибактериальных препаратов на микробную клетку (на примере E.coli и цефалоспоринов I поколения) // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Физика. 2013. Т. 13, вып. 2. С. 28-33.

9.  Hammer M. U., Brauser A., Olak C., Bresesinski G., Goldmann T., Gustmann T., Andra J. Lipopolysaccharide interaction is decisive for the activity on the antimicrobial peptide NK-2 against Escherichia coli and Proteus murabilis // Biochem. J. 2010. Vol. 427. P. 477-488.

10. Narayan G. P., Kartik V., Manoj P., Singh P. S., Alka G. Antibacterial activities of ethanolic extracts of plants used in folk medicine // IJRAP. 2010. Vol. 1, № 2. P. 529-535.

11.  Schwarzenbach M. S., Reimann P., Thommen V., Hergen M., Mumenthaler M., Guntherodt H.-J. Interferon ?-2a interactions on glass vial surfaces measured by atomic force microscopy // J. of Pharm. Sci. and Technol. 2002. Vol. 56, № 2. P. 78-89.

12. Уткин Д. В., Ерохин П. С., Осина Н. А., Коннов Н. П. Оценка фаголизабельности штаммов холерных вибрионов с использованием атомно-силовой микроскопии // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. 2013. Т. 13, вып. 3. С. 81–84.

13. Ella?  A., Harbi B., Lagha R., Bakhrouf A. The combined effects of starvation and pH on the virulence of Shigella sonnei ATCC25931 // Afr. J. of Biotechnol. 2013. Vol. 12, iss. 16. P. 2034–2040.

14. Teixeira P., Lima J., Azeredo J., Oliveira R. Adhesion of Listeria monocytogenes to materials commonly found in domestic kitchens // Intern. J. of Food Sci. and Technol.  2008. Vol. 43. P. 1239–1244.

15. Gaboriaud F., Dufrene Y. F. Atomic force microscopy of microbial cells: application to nanomechanical properties, surface forces and molecular recognition forces // Coll. and Surf. B : Bioint. 2006. Vol. 54. P. 1–10.

16. Abu-Lail L., Tao Y., Pinzon-Arango P. A., Howell A., Came sano T. A. Using atomic force microscopy to measure anti-adhesion effects on uropathogenic bacteria, observed in urine after cranberry juice consumption // J. of Biomat. and Nanobiotech. 2012. Vol. 3. P. 533–540.

17. Никиян А. Н., Татлыбаева Е. Б. Успехи и перспективы развития атомно-силовой микроскопии в микробиологии // Вестн. ОГУ. 2014. № 6, вып. 167. С. 112–119.

18. Wang C., Liu L.-L., Zhang A.-T., Xie P., Lu J.-J., Zou X.-T. Antibacterial effects of zinc oxide nanoparticles on Escherichia coli K88 // Afr. J. of Biotechnol. 2012. Vol. 11, № 44. P. 10248–10254.

19. Fernandes J. C., Eaton P., Gomes A. M., Pintado M. E., Malcata F. X. Study of the antibacterial effects of chitosans on Bacillus cereus (and it’s spores) by atomic force microscopy imaging and nanoidentation // Ultramicr. 2009. Vol. 109. P. 854–860.

20. Дерябин Д. Г., Васильченко А. С., Алешина Е. С., Тлягулова А. С., Никиян А. Н. Исследование взаимодействия углеродных наноматериалов с клетками Escherichia coli методом атомно-силовой микроскопии // Рос. нанотех. 2010. Т. 5, № 11–12. С. 136–141.

21. Fang J., Lyon D. Y., Wiesner M. R., Dong J. P., Alvarez P. J. J. Effect of a fullerene water suspension on bacterial phospholipids and membrane behavior // Environ. Sci. Technol. 2007. Vol. 41. P. 2636–2642.

22. Chada V. G. R., Sanstad E. A., Wang R., Driks A. Morphogenesis of Bacillus spore surfaces // J. of Bacteriol. 2003. Vol. 185, № 21. P. 6255–6261.

23. Ильина Т. С., Романова Ю. М., Гинцбург А. Л. Биопленки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина : феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития // Генетика. 2004. № 40. С. 1–12.

24. Zaman M. S., Goyal A., Dubey G. P., Gupta P. K., Chandra H., Das T., Ganguli M., Singh Y. Imaging and analysis of Bacillus anthracis spore germination // Microsc. Res. Tech. 2005. Vol. 66, № 6. P. 307–311.

25. Chao Y., Zhang T. Optimization of ? xation methods for observation of bacterial cell morphology and surface ultrastructures by atomic force microscopy // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011. Vol. 92. P. 381–392.

26. Кухтевич И. В., Жуков М. В., Чубинский-Надеждин В. И. Фиксация бактерий E. coli на подложке для измерений в жидкости методом атомно-силовой микроскопии // Науч. приборостроение. 2012. Т. 22, № 4. С. 56–61.

27. Клюева С. Н., Щуковская Т. Н., Ерохин П. С., Уткин Д. В. Оценка влияния биогенного амина серотонина на морфологию туляремийного микроба методом атомно-силовой микроскопии // Материалы XVIII Российского симпозиума по растровой электронной микроскопии и аналитическим методам исследования твердых тел. МО, Черноголовка, 2013. С. 470–471.

28. Wai S. N., Mizunoe Y. A., Kawabata T. S., Yoshidа S. Vibrio cholerae O1 strain TSI-4 produces the exopolysaccharide materials that determine colony morphology, stress resistance, and bio? lm formation // Appl. Environ. Microbiol. 1998. Vol. 64. P. 3648–3655.

29. Volle C. B., Ferguson M. A., Aidala K. E., Spain E. M., Nunes M. E. Spring constants and adhesive properties of native bacterial bio? lm cells measured by atomic force microscopy // Coll. and Surf. B: Bioint. 2008. Vol. 67, iss. 1. P. 32–40.

30. Ерохин П. С., Заднова С. П., Крепостнова И. М., Коннов Н. П., Уткин Д. В., Кузнецов О. С. Изучение динамических характеристик поверхностной структуры типичных штаммов Vibrio cholerae биовара Эльтор и их геновариантов методом атомно-силовой микро скопии // Материалы Рос. конф. по электрон. микроскопии – XXV. МО, Черноголовка, 2014.  Т. 2. С. 580–581.