Introduction to Culture in vitro of Corn Parthenogenetic Lines
Many modern selection technologies are based on the use of haploid plants as a starting material. The spontaneous frequency of haploid development is very low (0.01–0.1%). In this regard, the creation of plant forms with increased frequency of parthenogenesis is important. The collection of corn lines with an increased frequency of haploid plants in the progeny was created at the Department of Genetics of the Saratov State University. High costs are required for maintain of a plant collections in the field. Modern in vitro technologies allow more efficient organize the works on creation and preservation of germplasm. The aim of the study is the introduction of plants of parthenogenetic lines into a culture in vitro to create a collection of aseptic cultures of parthenogenetic maize forms. Mature embryos were used as a primary explants. Embryos were isolated from the grains, treated by the commercial preparation “Belizna” in a dilution of 1:1 within 5 minutes. The most effective medium on the stage of initiation of a sterile culture was a medium consisting only of agar and water. The MS medium supplemented with BAP 0.5 mg/l was a most effective on the stage of micropropagation.
1. Тырнов В. С. Гаплоидия у растений : научное и прикладное значение. М., 1998. 54 с.
2. Chase S. S. Monoploids and monopoid derivatives of maize (Zea mays L.) // Bot. Rew. 1969. Vol. 35, № 2. P. 117–168.
3. Суханов В. М., Тырнов В. С. Получение гаплоидов in vitro из гаметических клеток // Гаплоидия и селекция. Саратов, 1976. С. 99–110.
4. Лаптев Ю. П. Гетероплоидия в селекции растений. М., 1984. 248 с.
5. Круглова Н. Н. Микроспора как модельная система для изучения путей морфогенеза : автореф. дис. … д-ра биол. наук. Уфа, 2002. 48 с.
6. Дьячук Т. И. Технологические и селекционные аспекты гаплоидии (на примере пшеницы и ячменя) : дис. … д-ра биол. наук. Саратов, 2003. 290 с.
7. Dwivedi S. L., Britt A. B., Tripathi L., Sharma S., Upadhyaya H. D., Ortiz R. Haploids : Constraints and opportunities in plant breeding // Biotechnology Advances. 2015. Vol. 33. P. 812–829.
8. Hu H., Schrag T. A., Peis R., Unterseer S., Schipprack W., Chen S., Lai J., Yan J., Prasanna B. M., Nair S. K., Chaikam V., Rotarenco V., Shatskaya O.A., Zavalishina A., Scholten S., Schon C. C., Melchinger A. E. The genetic basis of haploid induction in maize identifi ed with a novel genome-wide association method // Genetics. 2016. Vol. 202. P. 1267–1276.
9. Еналеева Н. Х., Тырнов В. С Автономное развитие зародыша и эндосперма у кукурузы // Докл. АН СССР. 1983. Т. 272, № 3. С.722–725.
10. Апанасова Н. В., Юдакова О. И. Коллекция генетически маркированных линий кукурузы с повышенной частотой партеногенеза // 50 лет ВОГиС : успехи и перспективы : тез. Всерос. конф. (Москва, 8–10 нояб. 2016 г.). М., 2016. С. 72
11. Гуторова О. В., Апанасова Н. В., Юдакова О. И. Создание генетически маркированных линий кукурузы с наследуемым и индуцированным типами партеногенеза // Изв. Самар. науч. центра Российской академии наук. 2016. Т. 18, № 2(2). С. 341–344.
12. Апанасова Н. В., Смолькина Ю. В., Юдакова О. И. Проявление признаков партеногенеза у кукурузы в различной генотипической среде // Селекция растений : прошлое, настоящее и будущее : сб. материалов I Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием, посвящ. 140-летию НИУ «БелГУ» и 100-летию со дня рождения селекционера, ученого и педагога, доктор сельскохозяйственных наук, профессора З. И. Щелоковой (Белгород, 24–26 ноября 2016 г.) /под общ. ред. Е. В. Думачевой. Белгород, 2017. С. 9–12.
13. Апанасова Н. В., Гуторова О. В., Юдакова О. И., Смолькина Ю. В. Особенности строения и развития женских генеративных структур у линий кукурузы с наследуемым и индуцированным типами партеногенеза // Изв. Самар. науч. центра Российской академии наук. 2017. Т. 19, № 2 (2). С. 216–219.
14. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473–497.