Выделение и характеристика бактериофага Azospirillum lipoferum штамма SP 59В
Из микробных клеток Azospirillum lipoferum штамма SP59b выделен и описан бактериофаг (ЦAl-Sp59b). На газоне индикаторного штамма Sp59b бактериофаг ЦAl-Sр59b образует негативные колонии диаметром около 0,5 мм с ровными краями. Бактериофаг ЦAl-Sр59b вызывает лизис бактерий A. brasilense штаммов Br 14, KR 77, S 17, S 27, Sp 245, A. lipoferum Sp 59b, SR 65 и RG 20a, A. irakense KA 3, но не инфицирует клетки A. brasilense штаммов Sp 7, Cd, Jm 6B2, SR 75, A. Irakenze KBC 1, A. halopraeferans Au 4, A. amazonense Am 14; не активен в отношении бактерий гетерологичных родов. Бактериофаг обладает устойчивостью к воздействию температуры, хлороформом, сохраняет активность при хранении при ?4 oС в течение 7 мес. Определена его принадлежность к семейству Podoviridae.
1. Kropinski A. M.,Clokie M. R. J. Bacteriophages: Methods and protocols. Vol. 1: Isolation, characterization and interaction. Humana Press, a part of Springer Science + Business Media, LLC. 2009. Vol. 501. P. 307.
2. Dwivedi B., Schmieder R., Goldsmith D. B., Edwards R. A., Breitbart M. PhiSiGns: an online tool to identify signature genes in phages and design PCR primers for examining phage diversity // BMC Bioinformatics. 2012. Vol.13. P. 37.
3. Ashelford K. E., Norris S. J., Fry J. C., Bailey M. J., Day M. J. Seasonal population dynamics and interactions of competing bacteriophages and their host in the rhizosphere // Appl. Environ. Microbiol. 2000. Vol. 66, № 10. Р. 4193–4199.
4. Romero-Suarez S., Jordan B., Heinemann J.A. Isolation and characterization of bacteriophages infecting Xanthomonas arboricola pv. juglandis, the causal agent of walnut blight disease // World J. Microbiol. Biotechnol. 2012. Vol. 28, № 5. P. 1917–1927.
5. Elmerich C., Quiviger B., Rosenberg C., Franche C., Laurent P., Dцbereiner J. Characterization of a temperate bacteriophage for Azospirillum // Virology. 1982. Vol. 122. Р. 29–37.
6. Ewing B., Hillier L., Wendl M. C., Green P. Base-calling of automated sequencer traces using phred. I. Accuracy assessment // Genome Res. 1998. Vol. 8. Р. 175–185.
7. Germida J. J. Spontaneous induction of bacteriophage during growth of Azospirillum brasilense in complex media // Can. J. Microbiol. 1984. Vol .30. Р. 805–808.
8. Boyer M., Haurat J., Samain S., Segurens B., Gavory F., Gonzбlez V., Mavingui P., Rohr R., Bally R., Wisniewski-Dyй F. Bacteriophage prevalence in the genus Azospirillum and analyses of the fi rst genome sequence of an Azospirillum brasilense integrative phage // Appl. and Environ. Microbiology. 2008. Vol. 74, № 3. P. 861–874.
9. Адамс М. Бактериофаги. М. : Изд-во Иностр. лит., 1961. 272 с.
10. Ackermann H.-W. Bacteriophages Methods and Protocols: Isolation, Characterization, and Interaction / ed. M. R. J. Clokie, A. M. Kropinski. Humana Press, 2005. Vol. 1. P. 113 H.-W.126.
11. Гольдфарб Д. М. Бактериофагия. М. : Медгиз, 1961. 299 с.
12. Феоктистова Н. А. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения: автореф. дис. … канд. биол. наук. Саратов, 2006. 166 с.
13. Ackermann H.-W. 5500 phages examined in the electron microscope // Arch. Virol. 2007. Vol. 152. P. 227–243.
14. Тихоненко А. С. Ультраструктура вирусов бактерий. М.: Наука, 1968. 170 с.