The Influence of Aqueous Dispersions of Metal Nanoparticles on the Adhesive Properties of the Standard and Clinical Strains of Staphylococcus aureus
The initial stage of interaction of infectious agents with micro-organisms cells is the process of adhesion. So there is a need to develop methods that reduce the adhesive activity of microorganisms. Aim: to study the impact of water and water dialyzed dispersion of silver and copper nanoparticles obtained by biochemical synthesis, on the adhesive properties of the standard and clinical strains of S. aureus. Using standard techniques for cells of S. aureus determined the average index of adhesion, coefficient of adhesion, based on which the index is calculated adhesion of microorganisms. It is proved that the effect on the cells of standard and clinical strains of S. aureus with sub-lethal concentrations (0,25%) water and water dialyzed dispersions of silver and copper nanoparticles contributed to the lowering of the index of microorganisms adhesion in a 1.8–2.48 times compared with the control non-adhesive up to the level and did not depend on the type of used metal nanoparticles. Water and water dialyzed dispersion of metal nanoparticles can be used as active ingredients of antiseptic and disinfectants.
1. Fry D. E., Barie P. S. The Changing Face of Staphylococcus aureus : A Continuing Surgical Challenge // Surgical Infections. 2011. Vol. 12, № 3. P. 191–203.
2. May A. K. Skin and Soft Tissue Infections: The New Surgical Infection Society Guidelines // Surgical Infections. 2011. Vol. 12, № 3. P. 179–184.
3. Благонравова А. С., Афонин А. Н., Воробьева О. Н., Широкова И. Ю. Сравнительный анализ адгезивности микроорганизмов, выделенных от больных и с объектов внешней среды лечебно-профилактических учреждений // Мед. альманах. 2011. № 5 (18). С. 215–218.
4. Карташова О. Л., Норкина А. С., Чайникова И. Н., Смолягин А. И. Фенотипическая характеристика стафилококков и местный иммунитет при бактерионосительстве // Журн. микробиол. 2009. № 4. С. 99–103.
5. Сэндл Т. Механизмы бактериальной адгезии // Чистые помещения и технологические среды. 2014. № 1 (49). С. 54–58.
6. Edwards A. M., Potter U., Meenan N.A.G., Potts J. R., Massey R. C. Staphylococcus aureus Keratinocyte Invasion Is Dependent upon Multiple High-Affinity Fibronectin-Binding Repeats within FnBPA // PLoS ONE. 2011. Vol. 6, № 4. e18899.
7. Foster T. J. Colonization and infection of the human host by staphylococci : adhesion, survival and immune evasion // Veterinary Dermatology. 2009. Vol. 20. P. 456–470.
8. Зубарева И. В. Адгезия стафилококка и кишечной палочки к различным клеткам человека // Иммунопатология. Аллергология. Инфектология. 2003. № 4. С. 85–93.
9. Фалова О. Е. Взаимосвязь и степень выраженности адгезивной способности и антилизацимной активности стафилококков, выделенных с кожи людей, страдающих хроническими дераматозами // Вестн. Том. гос. ун-та. 2011. № 349. C. 188–189.
10. Бухарин О. В., Усвяцов Б. Я., Карташова О. Л. Биология патогенных кокков. М. : Медицина ; Екатеринбург : Изд-во УрО РАН, 2002. 278 с.
11. Дерябин Д. Г. Стафилококки : экология и патогенность. Екатеринбург : УрО РАН, 2000. 138 с.
12. Маянский А. Н., Чеботарь И. В. Стафилококковые биопленки : структура, регуляция, отторжение // Журн. микробиол. 2011. № 1. С. 101–108.
13. Ульянов В. Ю., Определенцева С. В., Заярский Д. А., Нечаева О. В., Вакарева М. М., Тихомирова Е. И. Биологическая кинетика пленкообразования эталонными
и клиническими штаммами Staphylococcus aureus // Sworld : сб. науч. тр. 2014. Т. 35, № 1. С. 40–42.
14. Пат. 2147487 РФ. Способ получения наноструктурных металлических частиц / Е. М. Егорова, А. А. Ревина, В. С. Кондратьева; № 99114319/02; заявл. 01.07.99; опубл. 20.04.2000. Бюл. № 11. 188 Научный отдел Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. 2017. Т. 17, вып. 2
15. Брилис В. И., Брилене Т. А., Ленцнер Х. П., Ленцнер А. А. Методика изучения адгезивного процесса микроорганизмов // Лабораторное дело. 1986. № 4. С. 210–212.
16. Гизатулина С. С., Биргер М. О., Кулинич Л. И., Фиш Н. Г. Способ оценки состояния микрофлоры кишечника человека по количеству адгезивно-активных колоний и типу адгезинов // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол. 1991. № 4. С. 21–23.
17. Шульгина Т. А., Нечаева О. В. Анализ эффективности действия нанопрепаратов в составе водных растворов на биологическую активность грамотрицательных и грамположительных микроорганизмов // Вестн. Костром. гос. ун-та им. Н. А.Некрасова. 2014. № 4. С. 31–36.
18. Ашмарин И. П., Воробьев А. А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л. : Изд-во мед. лит., 1986. 184 с.
19. Arora S., Rajwade J. M., Paknikar K. M. Nanotoxicology and in vitro studies : The need of the hour // Toxicol. and Appl. Pharmacol. 2012. № 258. P. 151–165.
20. Soni I., Salopek-Sondi B. Silver nanoparticles as antimicrobial agent: a case study of E. coli as a model for gram-negative bacteria // J. Colloid Interface Sci. 2004. № 275. P. 177–182.
21. Усвяцов Б. Я., Ханина Е. А., Бухарин О. В. Взаимодействие бактерий и эритроцитов // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2005. № 4. С. 89–95
22. Серегина Н. В., Честнова Т. В., Жеребцова В. А., Хромушкин В. А. Обзор биофизических особенностей микробной // Вестн. новых мед. технологий. 2008. Т. XV, № 3. С. 175–177.