Образец для цитирования:

Крицкая Т. А., Кашин А. С., Аникин В. В., Никельшпарг М. И. Генетический полиморфизм в популяциях Hieracium × robustum (Asteraceae) как результат деятельности фитофага-галлообразователя Aulacidea hieracii (Hymenoptera: Cynipidae) // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2019. Т. 19, вып. 3. С. 357-363. DOI: https://doi.org/10.18500/1816-9775-2019-19-3-357-363


Рубрика: 
УДК: 
58.073
Язык публикации: 
русский

Генетический полиморфизм в популяциях Hieracium × robustum (Asteraceae) как результат деятельности фитофага-галлообразователя Aulacidea hieracii (Hymenoptera: Cynipidae)

Аннотация

С помощью генетических межмикросателлитных маркеров (ISSR) изучен полиморфизм в популяциях Hieracium × robustum (Asteraceae) – растения-хозяина галлообразователя Aulacidea hieracii (Hymenoptera, Cynipidae). В каждой популяции анализировали растения H. × robustum со стеблевыми галлами орехотворки и без них. Установлено, что у отдельно взятых особей без галлов ISSR-фрагментов было в два раза меньше по сравнению с растениями, поврежденными орехотворкой. Все они имели четкий паттерн в агарозном геле, в то время как паттерны особей с галлами были хаотичны. Анализ молекулярной дисперсии (AMOVA) также показал, что значительная доля дисперсии обусловлена вариабельностью фрагментов, полученных от особей с галлами. Кластерный анализ (UPGMA) достоверно разделил всю исследуе мую выборку на два кластера. Первый кластер объединил особи H. × robustum с галлами, второй – особи без галлов. При отдельном анализе только особей без галлов выборка разбивается на кластеры в полном соответствии с географическим происхождением образцов. Включение же в матрицу фрагментов, полученных от растений с галлами орехотворки, привело к значительному искажению и бессистемности результатов.

Литература
  1. Howe G. A., Jander G. Plant immunity to insect herbi- vores // Annual Review of Plant Biology. 2008. Vol. 59. P. 41−66.DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.59.032607.092825
  2. Verhage A., Wees S. C. M. van, Pieterse C. M. J. Plant immunity: it’s the hormones talking, but what do they say? // Plant Physiology. 2010. Vol. 154. P. 536–540.DOI: https://doi.org/10.1104/pp.110.161570
  3. Hermsmeier D., Schittko U., Baldwin I. T. Molecular in- teractions between the specialist herbivore Manduca sexta (Lepidoptera, Sphingidae) and its natural host Nicotiana attenuata: I. Large-scale changes in the accumulation   of growth- and defense-related plant mRNAs // Plant Physiology. 2001. Vol. 125. P. 683−700.DOI: https://doi.org/10.1104/ pp.125.2.683
  4. Giri A. P., Wünsche H., Mitra S., Zavala J. A., Muck A., Svatoš A., Baldwin I. B. Molecular Interactions between the Specialist Herbivore Manduca sexta (Lepidoptera, Sphingidae) and Its Natural Host Nicotiana attenuata. VII. Changes in the Plant’s Proteome // Plant Physiology. 2006. Vol. 142. P. 1621–1641.DOI: https://doi.org/10.1104/pp.106.088781
  5. Конарев А. В. Молекулярные аспекты иммунитета растений и их коэволюции с насекомыми // Биосфера. 2017. Т. 9, № 1. С. 79–99.
  6. Аникин В. В., Никельшпарг М. И. Эффект увеличения числа листьев на растениях Hieracium × robustum (Asteraceae) при их заселении галлобразователем Au- lacidea hieracii (Hymenoptera: Cynipidae) // Бюл. Бот. сада Сарат. гос. ун-та. 2018. Т. 16, вып. 4. С. 49–54.
  7. Ryu J., Bae C.-H. Genetic diversity and relationship analy- sis of genus Taraxacum accessions collected in Korea // Korean Journal of Plant Resourses. 2012. Vol. 25, № 3. P. 329–338.
  8. Кашин А. С., Крицкая Т. А., Попова А. О., Пархомен- ко А. С. Генетическая дифференциация видов Chondril- la (Asteraceae) Европейской части России по данным ISSR-маркирования // Бюллетень Московского обще- ства испытателей природы. Отдел биологический. 2017. Т. 122, вып. 1. С. 60–70
  9. Hammer O., Harper D. A. T., Ryan P. D. PAST : Palaeonto- logica Statistics software package for education and data analysis // Palaeontologia Electronica. 2001. Vol. 4, № 1. P. 9.
  10. Excoffier L., Lischer H. E. L. Arlequin suite ver 3.5 :    A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows // Molecular Ecology Resourses. 2010. Vol. 10. P. 564–567.
  11. Grasela J. J., Mcintosh A. H. Application of Inter-Simple Sequence Repeats to insect cell lines: identification at the clonal and tissue-specific level // In vitro Cellular and Developmental Biology – Animal.  2003. Vol.  39. P. 353–363.
  12. Shouhani H., Dousti A., Radjabi R., Zarei M. Application of ISSR to study the genetic diversity of honeybee (Apis mellifera L.) populations in some areas of Iran // Journal of Bioscience and Biotechnology. 2014. Vol.  3, № 2.   P. 127–131.
  13. Xie J.-N., Guo J.-J., Jin D.-C., Wang X.-J. Genetic Di- versity of Sogatella furcifera (Hemiptera: Delphacidae) in China Detected by Inter-Simple Sequence Repeats // Journal of Insect Science. 2014. Vol. 14, № 233.DOI: https://doi.org/10.1093/jisesa/ieu095
  14. Куцев М. Г. Фрагментный анализ ДНК растений : RAPD, DAF, ISSR. Барнаул : ARTIKA, 2009. 164 с.
  15. Biémont C., Vieira C. Genetics : junk DNA as an evolution- ary force // Nature. 2006. Vol. 443, № 7111. P. 521–524.

 

 

Полный текст в формате PDF (на русском языке):