Cite this article as:

Петрунина А. ., Каневский М. В., Федоненко Ю. П., Гулий О. И., Коннова С. С. ОСОБЕННОСТИ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ И АНТИГЕННЫХ СВОЙСТВ ГЛИКОПОЛИМЕРОВ ПОВЕРХНОСТИ AZOSPIRILLUM BRASILENSE Sp7 И Sp245 ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ В ПРИСУТСТВИИ ФЛАВОНОИДОВ. Izvestiya of Saratov University. New series. Series: Chemistry. Biology. Ecology, 2014, vol. 14, iss. 4, pp. 83-?.


Heading: 
UDC: 
579.835+581.19

ОСОБЕННОСТИ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ И АНТИГЕННЫХ СВОЙСТВ ГЛИКОПОЛИМЕРОВ ПОВЕРХНОСТИ AZOSPIRILLUM BRASILENSE Sp7 И Sp245 ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ В ПРИСУТСТВИИ ФЛАВОНОИДОВ

Abstract

Показано, что выращивание Azospirillum brasilense Sp245 и Sp7 в
присутствии эффективных концентраций рутина и кверцетина,
установленных для данных культур, приводило к изменениям
электрооптических характеристик суспензий бактериальных
клеток. Продемонстрировано изменение в этих условиях физи-
ко-химических и антигенных свойств поверхности бактериаль-
ных клеток и макромолекулярной организации ЛПС.
 

References

1. Steenhoudt J., Vanderleyden J. Azospirillum, a freeliving
nitrogen-fi xing bacterium closely associated with
grasses: genetic, biochemical and ecological aspects //
FEMS Microbiol Rev. 2000. Vol. 24. P. 487–506.
2. Kumar R., Bhatia R., Kukreja K., Behl R. K., Dudeja S. S.,
Narula N. Establishment of Azotobacter on plant roots :
chemotactic response, development and analysis of
root exudates of cotton (Gossypium hirsutum L.) and
wheat (Triticum aestivum L.) // J. Basic. Microb. 2007.
Vol. 47, № 5. P. 436–439.
3. Fraysse N., Jabbouri S., Treilhou M., Couderc F., Poinsot
V. Symbiotic conditions induce structural modifi -
cations of Sinorhizobium sp. NGR234 surface polysaccharides
// Glycobiology. 2002. Vol. 12, № 11. P. 741–748.
4. Каневский М. В., Петрунина А. А., Гулий О. И.,
Федоненко Ю. П., Коннова С. А. Исследование
влияния метаболитов растений фенольной природы
на свойства поверхности и состав гликополимеров
бактерий Azospirillum brasilense SR55 // Изв. Самар.
науч. центра РАН. 2014. Т. 16, № 1. С. 286–290.
5. Fischer S. E., Miguel M. J., Morri G. B. Effect of root
exudates on the polysaccharide composition and the
lipopolysaccharide profi le of Azospirillum brasilense
Cd under saline stress // FEMS Microbiol. Lett. 2003.
Vol. 219. P. 53–62.
6. Каневский М. В., Коннова С. А., Бойко С. А., Федо-
ненко Ю. П., Игнатов В. В. Влияние кверцетина на
структуру липополисахарида внешней мембраны
бактерий Azospirillum lipoferum Sp59b // Изв. Сарат.
ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология.
2012. Т. 12, вып. 12. С. 50–54.
7. Sigida E. N., Fedonenko Y. P., Shashkov A. S., Zdorovenko
E. L., Konnova S. A., Ignatov V. V., Knirel Y. A. Structural
studies of the O-specifi c polysaccharide(s) from
the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense type
strain Sp7 // Carbohydr. Res. 2013. Vol. 380. P. 76–80.
8. Fedonenko Y. P., Zatonsky G. V., Konnova S. A., Zdorovenko
E. L., Ignatov V. V. Structure of the O-specifi c
polysaccharide of the lipopolysaccharide of Azospirillum
brasilense Sp245 // Carbohydr. Res. 2002. Vol. 337.
P. 869–872.
9. Calzuola I., Marsili V., Gianfranceschi G. L. Synthesis
of antioxidants in wheat sprouts // J. Agr. Food Chem.
2004. Vol. 52, № 16. P. 5201–5206.
10. Cesco S., Mimmo T., Tonon G., Tomasi N., Pinton R.,
Terzano R., Neumann G., Weisskopf L., Renella G.,
Landi L., Nannipiery P. Plant-borne fl avonoids released
into the rhizosphere : impact on soil bio-activities
related to plant nutrition. A review // Biol. Fert. Soils.
2012. Vol. 48. P. 123–149.
11. Konnova S. A., Makarov O. E., Skvortsov I. M., Ignatov
V. V. Isolation, fractionation and some properties
of polysaccharides produced in a bound form by Azospirillum
brasilense and their possible involvement in
Azospirillum-wheat interactions // FEMS Microbiol.
Lett. 1994. Vol. 118. P. 93–99.
12. Мирошников А. И., Фомченков В. М., Иванов А. Ю.
Электрофизический анализ и разделение клеток.
М. : Наука, 1986. 185 с.
13. Bunin V. D., Voloshin A. G. Determination of cell structures,
electrophysical parameters, and cell population
heterogeneity // J. Colloid Interf. Sci. 1996. Vol. 180.
P. 122–126.
14. Leive L., Shovlin V. K., Mergemhagen S. E. Physical,
chemical and immunological properties of lipopoly

saccharides released from Escherichia coli by ethylenaminetetraacetate
// J. Biol. Chem. 1968. Vol. 243.
P. 6384–6391.
15. Lindahl M., Faris A., Wadstorm T., Hjerten S. A new
test based on salting out to measure relative surface
hydrophobicity of bacterial cells // Biochim. Biophys.
Acta. 1981. Vol. 677. P. 471–476.
16. Hitchcock P. J., Brown T. M. Morphological heterogeneity
among Salmonells lipopolysaccharide chemotypes in
silver-stained polyacrilamide gels // J. Bacteriol. 1983.
Vol. 154. P. 269–277.
17. Tsai C. M., Frasch C. E. A sensitive silver stain detecting
lipopolysaccharides in polyacrilamide gels // Anal.
Biochem. 1982. Vol. 119. P. 115–119.
18. Mandal S. M., Chakraborty D., Dey S. Phenolic acids
act as signaling molecules in plant-microbe symbiose //
Plant Signal. Behav. 2010. Vol. 5. P. 359–368.
19. Patriquin D. G., Döbereiner J., Jain D. K. Sites and
process of association between diazotrophs and grasses
// Can. J. Microbiol. 1983. Vol. 29, № 8. P. 900–915.
20. Гулий О. И., Антонюк Л. П., Игнатов В. В., Игна-
тов О. В. Динамика изменений электрофизических
свойств клеток Azospirillum brasilense Sр7 при их
связывании с агглютинином зародыша пшеницы //
Микробиология. 2008. Т. 77, № 6. С. 782–787.
21. Bunin V. D., Voloshin A. G. Determination of cell structures,
electrophysical parameters, and cell population
heterogeneity // J. Colloid Interf. Sci. 1996. Vol. 180.
P. 122–126.
22. Каневский М. В., Коннова С. А., Бойко А. С., Федо-
ненко Ю. П., Сигида Е. Н., Игнатов В. В. Влияние
флавоноидов на состав гликополимеров поверхно-
сти Azospirillum lipoferum Sp59b // Микробиология.
2014. Т. 83, № 1, 2. С. 143–151.