Cite this article as:

Федорова В. ., Коннова С. С., Полянина Т. И., Федотов Э. А., Motin V. . ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РАЗЛИЧНЫХ МИШЕНЕЙ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ШТАММОВ CHLAMYDIA TRACHOMATIS. Izvestiya of Saratov University. New series. Series: Chemistry. Biology. Ecology, 2011, vol. 11, iss. 2, pp. 73-?.


Heading: 
UDC: 
579. 61; 571. 27

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РАЗЛИЧНЫХ МИШЕНЕЙ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ШТАММОВ CHLAMYDIA TRACHOMATIS

Abstract

Проведено сравнение диагностической значимости плазмидных
и хромосомных маркеров для детекции Chlamydia trachomatis в
клинических образцах пациентов с хламидийной инфекцией уро-
генитального тракта. В качестве плазмидных мишеней использо-
вали нуклеотидные последовательности orf3 и orf8, присутствие
которых определяли с помощью ПЦР. Продукт гена omp1 (МОМР),
кодируемого хромосомой, выявляли специфическими монокло-
нальными антителами. Показано, что по сравнению с плазмид-
ными мишенями диагностическая значимость МОМР оказалась
выше в 4,91–6,98 раза. Значение полученных результатов для
совершенствования лабораторной диагностики хламидиоза в
стадии обсуждения.
 

References

1. Biros E., Bodnar J., Biros I. et al. Nucleic acid amplifi cation
technique for detection of Chlamydia trachomatis
infection from clinical urogenital swabs // Folia Microbiol.
2007. Vol. 52 (4). P. 437–442.
2. Yuan Y., Zhang Y.-X., Watkins N. et al. Nucleotide and deduced
amino acid sequences for the four variable domains
of the major outer membrane proteins of the 15 Chlamydia
trachomatis serovars // Infect. Immun. 1989. Vol. 57.
P. 1040–1049.
3. Ward M. Chlamydial classifi cation, development and
structure // Br. Med. Bull. 1983. Vol. 39. P. 109–115.
4. Nuñes A., Nogueira P., Borrego M. et al. Chlamydia trachomatis
diversity viewed as a tissue-specifi c coevolutionary
arms race // Genome Biology. 2008. Vol. 9. P. 153.
5. Stephens R., Kalman S., Lammel C. et al. Genome sequence
of an obligate intracellular pathogen of humans:
Chlamydia trachomatis // Science. 1998. Vol. 282.
P. 754–759.
6. Carlson J., Whitmire W., Crane D. et al. The Chlamydia
trachomatis plasmid is a transcriptional regulator of chromosomal
genes and a virulence factor // Infect. Immun.
2008. Vol. 76. P. 2273–2283.
7. Peterson E., Markoff B., Schachter J. et al. The 7.5-kb
plasmid present in Chlamydia trachomatis is not essential
for the growth of this microorganism // Plasmid. 1990.
Vol. 23. P. 144–148.
8. Farencena A., Comanducci M., Donati M. et al. Characterization
of a new isolate of Chlamydia trachomatis which
lacks the common plasmid and has properties of Biovar
trachoma // Infect. Immun. 1997. Vol. 65. P. 2965-2969.
9. Stothard D., Williams J., Van Der P. et al. Identifi cation
of a Chlamydia trachomatis serovar E urogenital isolate
which lacks the cryptic plasmid // Infect. Immun. 1998.
Vol. 66. P. 6010–6013.
10. Жданов A. В., Квасов А. В., Бурменская О. В. и др.
Диагностика урогенитального хламидиоза методом
ДОТ-гибридизации с использованием ДНК-зонда,
меченного биотином // Бюл. экспериментальной био-
логии и медицины. 1996. № 9. С. 329–333.
11. Ripa T., Nilsson P. A variant of Chlamydia trachomatis
with deletion in cryptic plasmid: implications for use
of PCR diagnostic tests // Euro Surveill. 2006. Vol.
11. E061109. 2 17213548. Available from: ttp://www.
eurosurveillance.org/ew/2006/061109. asp #2.
12. Ripa T., Nilsson P. A Chlamydia trachomatis strain with
a 377-bp deletion in the cryptic plasmid causing falsenegative
nucleic acid amplifi cation tests // Sex. Transm.
Dis. 2007. Vol. 34. P. 255–256.
13. Herrmann B., Torner A., Low N. et al. Emergence and
spread of Chlamydia trachomatis variant, Sweden //
Emerg. Infect. Dis. 2008. Vol. 14. P. 1462–1465.
14. Storni E., Donati M., Marangoni A. et al. Comparative
PCR-based restriction fragment length polymorphism
analysis of the plasmid gene orf3 of Chlamydia trachomatis
and Chlamydia psittaci // FEMS Immunol. Med.
Microbiol. 2006. Vol. 48(3). P. 313–318.
15. Mahony J., Luinstra K., Sellors J. et al. Comparison of
plasmid- and chromosome-based polymerase chain reaction
assays for detecting Chlamydia trachomatis nucleic
acids // J. Clin. Microbiol. 1993. Vol. 31 P. 1753–1758.
16. Полянина Т. И., Голова И. В., Дружкин И. Н., Фе-
дотов Э. А., Федорова В. А. Апробация экспери-
ментальной диагностической тест-системы для
лабораторной диагностики хламидийной инфекции в
дот-иммуноанализе // Развитие научных исследований
и надзор за инфекционными заболеваниями: материа-
лы междунар. конф. СПб., 2010 C.127.

17. URL: http://www.vetlib.ru/infection_bolezni/page,5,93-
diagnostika-xlamidiozov-zhivotnyx-uchebno.html.
18. Clarke I. Chlamydial transformation: facingup to the
challenge Proceedings // The Materials of the 12th Intern.
Sympos. on Human Chlamydial Infections. Austria. Salxburg
June, 20–25. 2010. P. 295–304.
19. Quint K., Van Doorn L. J., Kleter B. et al. A highly sensitive,
multiplex broad-spectrum PCR – DNA – Enzyme
Immunoassay and reverse hybridization assay for rapid
detection and identifi cation of Chlamydia trachomatis //
J. of Molecular Diagnostics. Vol. 9(5). 2007. P. 631–638.
20. URL: http://www.ncbi.nlm.nih.gov.
21. Clarke I., Lockey S., Skilton R. at al. Plasmid evolution in
Chlamydia trachomatis // Materials of the Sixth meeting
of the European society for Chlamydia research. Denmark.
Kopengagen. July. 2008. P. 145–146.
22. Кутлин А. В., Дробышевская Э. И., Шаткин А. А.
Иммунохимические и биологические свойства моно-
клональных антител к Chlamydia trachomatis // ЖМЭИ.
1996. № 1. C. 3–6.

Full text (in Russian):