Рубрика: 
УДК: 
579.835: 577.114.083: 577.114.4: 577.114.7: 577.118

БИОСОРБЦИЯ Cu(II) ЭКЗОПОЛИСАХАРИДОМ ENTEROBACTER CLOACAE K7

Аннотация

Выделен и охарактеризован экстраклеточный полисахарид (ЭПС), продуцируемый грамотрицательными непатогенными ризосферными бактериями Enterobacter cloacae K7. Исследован процесс биосорбции катионов Сu(II) из водного раствора полученным экзополисахаридом. Максимальная сорбционная способность биосорбента составила 0.17 мМ мг−1 ЭПС или 12 г меди на 1 г ЭПС при рН 5, Т = 25 °С и времени инкубации 30 мин. Экспериментальные значения адсорбции катионов Сu(II) (Qэксп) биосорбентом были сопоставимы с максимально возможным значением адсорбции (Qмакс = 0.18 мМ), рассчитанным с использованием уравнения Лэнгмюра. Степень аффинности между исследуемым полисахаридом и катионами Cu(II) была высокой и составила 2.04 мМ л−1. Полученные данные имеют практическую ценность при создании технологии реме-диации водных объектов от тяжёлых металлов.

Литература

1. Gadd G. M. Heavy metal accumulation by bacteria and other microorganisms // Experientia. 1990. Vol. 46, iss. 8. P. 834–840. 2. De Philippis R., Colica G., Micheletti E. Exopolysaccharide producing cyanobacteria in heavy metal removal from water : molecular basis and practical applicability of the biosorption process // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011. Vol. 92. P. 697–708. 3. Sponza D. T. Extracellular polymer substances and physicochemical properties of fl ocs in steady and unsteadystate
activated sludge systems // Process Biochem. 2002. Vol. 37. P. 938–998. 4. Pal A., Paul A. K. Microbial extracellular polymeric substances : central elements in heavy metal bioremediation // Indian J. Microbiol. 2008. Vol. 48. P. 49–64. 5. Geddi J. L., Sutherland I. W. Uptake of metals by bacterial polysaccharides // J. Appl. Bacteriol. 1993. Vol. 74.
P. 467–472. 6. Wingender J., Neu T. R., Flemming H. C. Microbial extracellular polymeric substances : characterisation, structure and function // Berlin : Springer, 1999. 123 pp.
7. Bridge T. A. M., White C., Gadd G. M. Extracellular metal-binding activity of the sulphate-reducing bacterium Desulfococcus multivorance // Microbiology. 1999.
Vol. 145. P. 2987–2995. 8. Guibaud G., Tixier N., Bouju A., Baudu M. Relationbetween extracellular polymers composition and its ability to complex Cd, Cu and Pb // Chemosphere. 2003. Vol. 50. P. 1701–1710. 9. Liu Y., Lam M. C., Fang H. H. P. Adsorption of heavy metals by EPS of activated sludge // Water Sci. Technol. 2001. Vol. 43. P. 59–66. 10. Vijayaraghavan K., Yeoung-Sang Y. Bacterial biosorbents and biosorption // Biotechnol. Adv. 2008. Vol. 26. P. 266–291. 11. Her nandez A., Mellado R.P., Martinez J. L. Metal
accumulation and vanadium-induced multidrug resistance by environmental isolates of Escherichia hermannii and Enterobacter cloacae // Appl. Environ. Microbiol. 1998.
Vol. 64. P. 4317–4320. 12. Suri ya J., Bharathiraja S., Rajasekaran R. Biosorption of Heavy Metals by Biomass of Enterobacter Cloacae Isolated from Metal-Polluted Soils // Inter. J. Chem. Tech. Res. 2013. Vol. 5, iss. 3. P. 1329–1338. 13. Iyer A., Mody K., Jha B. Accumulation of hexavalent chromium by an exopolysaccharide producing marine
Enterobacter cloacaee // Mar. Pollut. Bull. 2004. Vol. 49. P. 974–977. 14. Lu W.-B., Shi J.-J., Wang C.-H., Chang J. S. Biosorption of lead, copper and cadmium by indigenous isolate
Enterobacter sp. J1 possessing high heavy-metal resistance // J. Hazard. Mater. 2006. Vol. B134. P. 80–86. 15. Naik M. M., Pandey A., Dubey S. K. Biological characterization
of lead-enhanced exopolysaccharide produced by a lead resistant Enterobacter cloacae strain P2B // Biodegradation. 2012. Vol. 23. P. 775–783. 16. Материалы к разработке Государственной программы «Водная стратегия России» // Аналитический вестн. Сер.: Экономическая политика. М., 2008. Вып. 6. URL: http://iam.duma.gov.ru/node/8/4454/14654 (дата обращения:10.06.2014). 17. Kryuchkova Y. V., Burygin G. L., Gogoleva N. E., Gogolev Y. V., Chernyshova M. P., Makarov O. E., Fedorov E. E., Turkovskaya O. V. Isolation and characterization of a glyphosate-degrading rhizosphere strain, Enterobacter cloacae K7 // Microbiol. Res. 2013. Vol. 169, iss.1. P. 99–105. 18. Sambrook J., Fritsch E. F., Maniatis T. Molecular cloning : a laboratory manual, 2nd. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989. 19. Фед оненко Ю. П., Здоровенко Э. Л., Коннова С. А., Игнатов В. В., Шляхтин Г. В. Сравнительная характеристика липополисахаридов и О-специфических полисахаридов Azospirillum brasilense Sp245 и его
омегон-Km мутантов КМ018 и КМ252 // Микробиология. 2004. Т. 73, № 2. С. 180–187. 20. Konnova S. A., Makarov O. E., Skvortsov I. M., Ignatov V. V. Isolation, fractionation and some properties of polysaccharides produced in a bound form by Azospirillum brasilense and their possible involvement in Azospirillum-wheat root interactions // FEMS Microbiol.
Lett. 1994. Vol. 118. P. 93–99. 21. O’Neill M. A., Morris V. J., Selvendran R. R., Suther land I. W., Taylor I. T. Structure of the extracellular gelling polysaccharide produced by Enterobacter (NCIB 11870) species // Carbohydr. Res. 1986. Vol. 148, iss. 1. P. 63–69. 22. Isobe Y. I., Matsumoto Y., Yokoigawa K., Kawai H. Properties of an Ex tracellular Polysac-charide Produced by a Strain of Enterobacter Isolated from Pond Water // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2001. Vol. 65, iss. 6. P. 1399–1401. 23. Mayer H., Tharanathan R. N., Weckesser J. Analysis of lipopolysaccharides of Gram-negative bacteria // Methods Microbiol. 1985. Vol. 18. P. 157–207. 24. Naik M. M., Pandey A., Dubey S. K. Biological characterization of lead-enhanced exopolysaccharide produced by a lead resistant Enterobacter cloacae strain P2B // Biodegradation. 2012. Vol. 23, iss. 5. P. 775–783.
25. O’Neill M. A., Morris V. J., Selvendran R. R., et al. Structure of the extracellular gelling polysaccharide produced by Enterobacter (NCIB 11870) species // Carbohydr. Res.
1986. Vol. 148, iss. 1. P. 63–69. 26. Isobe Y., Matsumoto Y., Yokoigawa K. et al. Properties of an extracellular polysaccharide produced by a strain of Enterobacter isolated from pond water // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2001. Vol. 65, iss. 6. P. 1399–1401. 27. Meade M. J., Tanenbaum S. W., Nakas J. P. Optimization of novel extracellular polysacchar ide production by an Enterobacter sp. on wood hydrolysates // Appl. Environ. Microbiol. 1994. Vol. 60, № 4. P. 1367–1369.28. Kratochvil D., Volesky B. Advances in biosorption of
heavy metals // Trends Biotechnol. 1998. Vol. 16, iss. 7. P. 291–300. 29. Vegliò F. Modelling of equilibrium heavy metal biosorption data at different pH: a possible methodological approach // Eur. J. Mineral Process. Environ. Protect. 2003. Vol. 3, № 1. P. 49–57. 30. Tunali S., Çabuk A., Tamer A. Removal of lead and copper ions from aqueous solutions by bacterial strain isolated from soil // Chem. Eng. J. 2006. Vol. 115. P. 203–211. 31. Фридрихсберг Д. А. Курс коллоидной химии. СПб. : Химия, 1995. С. 150–178.